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实验操作12冰冻切片的制备油红o染 [复制链接]

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冰冻切片(frozensection)是一种在低温条件下使组织快速冷却到一定硬度,然后进行切片的方法。组织经固定或不固定均可进行冰冻切片。

操作步骤:

1.组织取材

2.组织处理

不需固定的组织可以直接进行后续操作。

对于需要固定的组织:4%多聚甲醛固定1-2小时,PBS洗涤,蔗糖溶液沉降过夜。

3.组织包埋

目前科研中常用OCT包埋剂进行组织包埋。OCT是一种聚乙二醇和聚乙烯醇的水溶性混合物,其用途是在冰冻切片时支撑组织,以增加组织的连续性,减少皱折及碎裂。

在合适模具(如锡纸折成的小盒)中倒入一层OCT,覆盖住底部,将组织取出放入模具,继续加OCT直到完全淹没组织,防止组织上浮,避免产生气泡。之后在液氮或冰冻切片机内进行速冻,制成冻块后放入冷冻切片机切片。

4.切片

1)将冻好的组织块固定在样品托上。切片时,温度以-15℃~-20℃为宜,根据不同的组织特性可以进行调节。如果温度太低,片子容易卷曲和破碎;如果温度太高,片子就会皱成一堆。

2)调整好刀片和组织块的方向,使其垂直。刀片的锋利性很重要,当片子质量下降时最好立即更换刀片。

3)先切掉表面的包埋剂,直至待取组织露出后调整好片子厚度开始正式切片。切片厚度根据不同的组织和实验目的而定,原则上是细胞密集的薄切,纤维多细胞稀的可稍为厚切。

4)正式切片前要调整好防卷板。准确地将防卷板调至适当的位置,以保证切片时,切出的切片能在第一时间顺利地通过刀与防卷板间的通道,平整地躺在持刀器的铁板上。

5)正式切片获取的目的组织片用刷子小心转移至玻璃载玻片上,并铺平整,使其牢牢粘附。可选取不同位置和区域进行连续切片。

5.染色封片

含有切片的载玻片放入相应的固定液固定后,PBS进行洗涤。之后按照相应的染色需求进行染色。最后通过淬灭封片剂用盖玻片封片,注意不得有气泡。

对于脂肪的观察,应该首选油红O染色,对于脂肪组织,所选固定液以甲醛固定效果最为理想,常用中性甲醛固定液,但应该注意的是,应避免使用含有有机溶剂(如乙醇)的固定液,以避免固定液中的有机溶剂对组织内脂肪的溶解,此外,含汞固定剂也应避免,昇汞可使组织变硬,导致切片困难。油红O属于偶氮染料,极易溶解于脂类物质内,染色液为由异丙醇和水配制成的油红O乳化液,染色时,组织切片内的脂肪吸取染色液的油红O,使脂肪具有了染料的颜色—红色,从而对细胞内的脂肪滴进行定性和定位。

冰冻切片,厚度为10-15um,常温干燥15-20min。异丙醇浸洗3-5分钟,避免把水带入油红O,油红O染液10分钟,60%异丙醇溶液洗3分钟,再蒸馏水洗,苏木素复染细胞核5分钟,分化返蓝,封片剂封片。

结果:脂肪滴呈红色或者橘红色,细胞核呈淡蓝色。

注:

1、由于脂肪易溶于有机溶剂,所以一般采用冰冻切片染色来显示。

2、脂肪染色的冰冻切片不宜太薄,切片厚8-10μm,过薄的切片常会使脂质丢失。

3、染色结果不能长期保存,应尽快观察。

4、油红O染色常用作染脂肪,脂类染色法最常用以证明脂肪变性,脂肪栓子以及肿瘤的鉴别。脂类染色使用最广泛的染料是苏丹染料,最常用的有苏丹Ⅲ,苏丹Ⅳ,苏丹黑及油红O等。脂肪被染色,实际上是苏丹染料被脂肪溶解吸附而呈现染料的颜色。

5、油红O储备液:油红O0.5g溶于%异丙醇ml,4℃避光密闭保存。

油红O工作液:实验前,将储备液与蒸馏水6:4比例稀释,并过滤,现配现用。

6、苏木精复染的时间不宜过长,控制在1min以内。

7、水性封片剂封固(甘油明胶),不能用中性树胶封固。

8、60%异丙醇分化,应于镜下控制至脂肪组织呈鲜红色,间质无色为度。

9、封片时,发现气泡,不能压盖玻片驱赶以免脂滴移位。

Erica

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